NADH測定手順と解析方法

NAD と NADH は代謝に関わるピリジンヌクレオチドで、ミトコンドリア内で補酵素として機能します。呼吸や光合成などのエネルギー産生反応に必須で、ATP 合成を支える重要な分子です。

必要なもの

  • 測定対象の細胞または組織
  • NADH アッセイキット
  • リン酸緩衝生理食塩水 (PBS)
  • ドライアイス
  • 加温ブロック(60°C)
  • 96ウェルプレート
  • 遠心機
  • ラベル付きチューブ
  • プレートリーダー(分光光度計または蛍光計)
  • ボルテックス
  • 既知濃度の NADH 標準液

測定手順

  1. 細胞/組織の洗浄と抽出
    冷却した PBS で対象を洗浄し、抽出バッファーに入れた後、ドライアイス上で 20 分、室温で 10 分間処理する。これを 1 回繰り返す。
  2. 遠心と上清の回収
    ボルテックスで 10 秒混合し、5 分間遠心して細胞・組織残渣を沈降させる。上清を清浄なチューブに移す。
  3. 酵素除去フィルタリング
    上清を専用フィルターで濾過し、NADH を分解する酵素を除去する。
  4. NAD の変性(総 NAD 測定は除外)
    上清 200 µL を別チューブに取り、60°C の加温ブロックで 30 分間加熱し NAD を変性させる。その後冷却し遠心し、上清を回収。50 µL を 96 ウェルプレートに移し、各サンプルは二重または三重に配置する。総 NAD (NADt) を測定したい場合は加熱しない。
  5. サイクリングミックスの添加とインキュベーション
    プレートにサイクリングミックスを加えて混合し、5 分間インキュベートする。その後、開発液 10 µL を加えて室温で最大 4 時間反応させ、停止液で反応を止める。最後にプレートリーダーで吸光度または蛍光を測定する。

標準曲線の作成と濃度計算

  1. 標準液の調製
    既知濃度の NADH 標準液を抽出バッファーで希釈し、テストサンプルと同じ最終体積になるように複数濃度を作製する。96 ウェルプレートに同時に配置し、吸光度を測定する。
  2. 標準曲線の描画
    X 軸に濃度、Y 軸に吸光度を取った標準曲線を作成し、各サンプルの平均吸光度から濃度を読み取る。
  3. NAD/NADH 比の算出
    総 NAD (NADt) を測定した場合は、NADt から NADH を差し引き、得られた NAD で NADH を割って比率を求める。

以上の手順で NADH の定量と NAD/NADH 比の算出が可能です。

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